REVISTA DE ENFERMERÍA 

NUESTRO DEPARTAMENTO
 

 

GUÍA DE MANEJO DE ASEPSIA Y ANTISEPSIA
PARTE II

María del Pilar Cuervo Polanco*, Margarita González Calderón**, Luz Stella Gil Sánchez***, Claudia E. Cruz Jiménez°, Deisy Mora Maldonado°°

La segunda parte de esta guía incluye el manejo de los diferentes equipos (endoscopios, instrumental básico y especializado).

3. EQUIPOS E INSTRUMENTAL

3.1 Esterilizadores(12,33-35)

Se realiza limpieza semanal de acuerdo con el siguiente procedimiento:

3.1.1 Materiales

Detergente, bayetillas y tela libre de pe-lusas, balde, cepillo de cerdas suaves con mango largo, guantes negros.

3.1.2 Procedimiento

• La cámara del esterilizador debe estar fría, las válvulas de ingreso de vapor cerradas, el interruptor en off. Extraer las canastillas.

• Humedecer la bayetilla en solución jabonosa y proceder a limpiar el techo, paredes internas y base de la cámara.

• Cepillar vigorosamente el techo, pa-redes y base de la cámara con solu-ción jabonosa.

• Enjuagar con bayetilla humedecida en agua corriente: techo, paredes y base de la cámara.

• Secar el interior de la cámara con bayetilla o tela que no libere motas o pelusas.

• En el esterilizador de vapor: retirar el filtro de drenaje, y manualmente sacar de allí sedimentos y/o pelusa. Enjuáguelo y colóquelo en su lugar.

• Lavar los entrepaños o canastillas utilizando solución jabonosa y agua a presión luego séquelos con una tela y colóquelos en su respectivo lugar.

• Realizar limpieza externa de la puerta y el panel de controles con tela libre de pelusa levemente humedecida en detergente, enjuague y seque.

NOTA. No se deben utilizar abrasivos, ni fibra de acero para la limpieza de la cámara.

 

3.2 Incubadoras

Se realiza limpieza con bayetilla humedecida con jabón líquido desinfectante de nivel intermedio, (Anexo 2) por las paredes internas y externas de la incubadora y posteriormente lavar con bayetilla humedecida con agua limpia.

3.2.1 Incubadora cerrada

1. Una vez egresa el paciente retirar la ropa de la incubadora

2. Ubicar la incubadora en el área sucia y alistar el equipo:

• Jabón líquido y desinfectante de nivel intermedio
• Bayetillas limpias
• Copitos
• Guantes limpios

3. Retirar las manguillas y los empaques (cauchos que rodean las ventanillas)

4. Humedecer la bayetilla con el jabón líquido y limpiar el área externa e interna de la incubadora, luego enjuagar con la bayetilla humedecida en agua limpia

5. Sacar la colchoneta, la bandeja de la colchoneta y la base metálica con los aditamentos que tiene en su interior y limpiar con el jabón desinfectante (Anexo 2). Enjuagar con abundante agua debajo del grifo

6. Levantar los "clic" que sostienen el motor y limpiar todos sus elementos incluyendo cauchos y empates

7. Abrir la tapa del tanque de humidificación y limpiar con copitos de algodón

8. Hacer limpieza general de la base metálica de la incubadora con el jabón y bayetilla húmeda

9. Dejar la incubadora en aireación una hora aproximadamente antes de ser utilizada nuevamente

10.Secar toda la unidad y colocar la ropa de cama.

3.2.2 Incubadora abierta

1. Después de haber atendido un pa-ciente retirar la ropa de cama

2. Realizar limpieza con jabón líquido a la colchoneta, la base y el canéster

3. Enjuagar con agua limpia. El canéster se deja en agua jabonosa por una hora aproximadamente, luego enjuagar y secar

4. Realizar la misma limpieza en el área metálica de la incubadora

5. Realizar limpieza de la sonda o sensor de temperatura sin humedecer el conector que va a la incubadora teniendo especial cuidado con la punta del cable (sitio don-de está ubicado el sensor).

3.3 Equipos de Oxigenoterapia

3.3.1 Cámaras de Hood

Cambiar la cámara de Hood que esté en uso diariamente y someterla a un proceso de limpieza igual al descrito para las incubadoras empleando jabón líquido desinfectante de nivel intermedio. (Anexo 2)

3.3.2 Cánulas nasales y mascarillas faciales

Cambie mangueras, cánulas nasales o máscaras faciales usadas con oxígeno entre un paciente y otro, puesto que las mangueras, cánulas nasales y máscaras faciales son de uso exclusivo para cada paciente. (34,36) Categoría IB (36)

Use únicamente agua estéril en los mi-cronebulizadores.(36) Desechar el material no reusable. (32-38)

Se recomienda la desinfección de alto nivel y/o esterilización para material reusable (respirómetros portables, balón de ambú y otros dispositivos de uso múltiple). (34,36)

3.3.3 Cánulas de Guedell

Después de ser empleadas, sumérjalas en detergente enzimático durante 5 minutos. Lavar, enjuagar, secar y enviar a esterilización.

3.3.4 Circuitos de ventilador

Cambie en un tiempo no menor de 48 horas circuitos respiratorios, incluyendo tubos y válvulas de exhalación y humidificadores del ventilador que haya sido usado con el mismo paciente. Categoría IA (36)

En ausencia de filtro los circuitos de ventilador deben ser cambiados por el personal de terapia cada 48 horas. En presencia de filtro, cada 8 días(36). NE: Categoría IA No esterilice o desinfecte la parte interna de los ventiladores (36) NE: Categoría IA.

3.4 Instrumental quirúrgico

Se considera de vital importancia en el manejo de los elementos e instrumentos que se utilizan para procedimientos quirúrgicos en relación con la desinfección y esterilización. A continuación se clasifican dichos instrumentos y se indica el procedimiento de desinfección que se debe realizar con cada uno de estos.

3.4.1. Clasificación

3.3.1.1 Según la Complejidad del Procedimiento Quirúrgico. (Tabla 1)

Tabla 1. Según la Complejidad del Procedimiento Quirúrgico.

Tipo de instrumental

Función

Ejemplos

Básico

Son aquellos instrumentos necesarios para realizar procedimientos de rutina y son de uso general

Quirúrgico
Especializado
Son aquellos instrumentos específicos de cada especialidad quirúrgica. Se caracterizan por ser precisos, finos, atraumáticos y elaborados con materiales especiales Instrumentos para micro-cirugía y endoscopia.

3.4.1.2 Según la Función que Desempeña. (Tabla 2)

Tabla 2. Según la Función que Desempeña

Tipo de instrumental

Función

Ejemplos

Diéresis

Es el instrumental utilizado para incidir y seccionar

Mangos de bisturí, tijeras, agujas de biopsia, curetas, gubias, cizallas, osteotómos, etc.

Disección

Es utilizado para obtener un agarre firme y se usan de acuerdo con la consistencia del tejido y a la maniobra quirúrgica practicada

Pinzas de disección con garra y sin garra, pinzas rusas, pinzas de Adson etc.

Homeostasis

Es utilizado para fijar el tejido y ejerce la función hemostática mediante estrías en su extremo

Pinzas de Kelly, Mosquito, Rochester, Heaney, Allis

De separación o retracción

Utilizado para exponer tejidos y cavidades

Se encuentran los separadores manuales: Parker, Senn, Armi y separadores autoretentivos como los Weithlaner, Gelpi, Balfour.

De aprehensión

Diseñados para traccionar órganos y tejidos de forma atraumática.

Pinzas de Babcock, Penington, Allis, Duval, clamp intestinales, vasculares, pinzas de Backhaus

Drenaje

Diseñados para succión o aspiración de líquidos y sondeo de conductos

Cánulas de succión: Yan-kauer, Frazier, pool. Sondas acanaladas y en botón, sondas vesicales metálicas y dilatadores

Síntesis

Diseñados para sostener agujas de sutura en forma firme y permitir la angulación y la fuerza deseada para colocar los puntos de sutura.

Portaagujas con cremallera y sin cremallera.

3.4.2 Instrumentos y Equipos para Perforación, Neumáticos y Eléctricos: Perforadores y taladros ortopédicos, craneótomos, sierras oscilantes y reciprocantes, esternótomos etc.

3.4.3 Endoscopios

Pueden ser endoscopios rígidos y flexibles como el Broncoscopio, Cistoscopio, Colonoscopio, Gastroscopio, Histeroscopio, Laparoscopio y Toracoscopio.

El anexo 3 especifica el manejo de asepsia que se debe dar a este tipo de elementos.

 

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

En la Guía de Manejo de Asepsia y An-tisepsia Parte I.

Anexo 1. FORMA DE PREPARACIÓN DEL HIPOCLORITO DE SODIO(3)

Concentración en PPM Volumen de agua

Cantidad de cloro cc

Equivalencias

50

1litro 0,3 cc 2 gotas
 

5 litros

1,4cc 1⁄2 cucharadita
  10 litros 3,8 cc 1 cucharadita

500

1litro

3,8 cc

1 cucharadita

  5 litros 19 cc 2 cucharadas
  10 litros 38 cc 4 cucharadas

5000

1litro

38 cc

4 cucharadas

  5 litros 190 cc 3 pocillos tinteros
  10 litros 380 cc 2,5 pocillos chocolateros

1 pocillo tintero (80cc), 1 pocillo chocolatero (160 cc), 1 cucharada (10 cc), 1 cucharadita (5 cc)
cc de hipoclorito = litros a preparar * # ppm * 10 concentración del producto

anexo 2.1. DESINFECTANTES Y ANTISÉPTTICOS DE USO HOSPITALARIO 2,3,14,16,31,39,41,43)

DESINFECTANTE

YODÓFOROS

• Yodopovidona

• Polivinil-pirolidona

Nombre comercial:

Isodine

Bactrodine

Yodo

AMONIO CUATERNARIO

• Gloruro de Benzalconio

• Cetrimida

Nombre comercial:

Ionax

FENOLES

PERÓXIDO DE HIDRÓGENO

Nombre comercial:

Agua oxigenada

ÁCIDO PERACÉTICO

MECANISMO
DE ACCIÓN

Disrupción de la síntesis y estructura del ácido nucleico y proteínas

Se une a una forma irreversible a las proteínas bacterianas precipitándolas

Oxidación de elementos protoplasma bacteriano

Inactivación de enzimas productoras de energía

Desnaturalización de proteínas esenciales y alteración de la membrana celular

Daño a la membrana celular y pérdida de constituyentes citoplasmáticos

Inactivación irreversible de oxidasas y deshidrogenasas de membrana

Precipita las proteínas celulares

Actúa como biocida. Daña la membrana celular, el ADN y otros componentes esenciales de la célula

Desnaturalización de las proteínas

Disminución de la permeabilidad de la pared celular

Oxidación de enzimas, proteínas y otros metabolitos

ESPECTRO
ANTI-MICROBIANO

Gram+ (+), gram- (+), M. tuberculosis (+), Fungicida (+), Virus (+), Espora (-), Priones (-) Gram+ (+), gram- (+), M. tuberculosis (-), Fungicida (+), Virus (-), Espora (-), Priones (-) Gram+ (-), gram- (+/-), M. tuberculosis (+), Fungicida (+), Virus (+), Espora (-), Priones (-) Gram+ (+), gram- (+), M. tuberculosis (+), Fungicida (+), Virus (+), Espora (+), Priones (+) Gram+ (+), gram- (+), M. tuberculosis (+), Fungicida (+), Virus (+), Espora (?), Priones (-)
DESINFECCIÓN
RECOMENDADA
Desinfección Nivel Intermedio (DNI) Desinfección de Bajo Nivel (DBN) Desinfección Nivel Intermedio (DNI) Desinfección de Bajo Nivel (DBN) Desinfección Nivel Intermedio (DNI)

CONCENTRACIÓN
Y TIEMPO DE INMERSIÓN

0,0002% por 10 min., efecto bactericida 1% 10 segundos 0,4-1,6% acuoso 0,4 - 5% 3 - 25% 10.000 ppm/15 minutos exposición
USOS Antiséptico

Piel

 

Superficies como pisos, paredes, carros y otros muebles Desinfección de superficies Desinfección de superficies y objetos inanimados Equipos endoscopios Hemodializadores Instrumentos dentales
DESVENTAJAS Incompatibilidad Materia orgánica    

 

Toxicidad Hipotiroidismo en neonatos No  Hiperbilirrubinemia en neonatos Irrita piel y ojos No
Acción corrosiva Deterioro de superficies Si   Si Si
Otros Mancha No acción residual   Inestable al calor y la luz Inestable al calor y la luz

 

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